试剂盒组成(2-8℃保存)
酶标板(Coated Wells) | 96孔 | 酶标抗体工作液(Enzyme Conjugate) | 12ml |
10×标本稀释液(Sample Buffer) | 12ml | 20×浓缩洗涤液(Wash Buffer) | 50ml |
标准品(Standards):4umol/瓶 | 2瓶 | 底物工作液(TMB Solution) | 12ml |
第一抗体工作液(Biotinylated Antibody) | 12ml | 终止液(Stop Solution) | 12ml |
准备试剂与收集血样
1. 收集标本:血清、谷胱甘肽过氧画出标准曲线。化物自来水管网清洗血浆、大鼠
试剂盒性能
1. 灵敏度:最小的谷胱甘肽过氧GSH-Px检测浓度小于16nmol/ml。将反应板充分混匀后置37℃120分钟。化物
8. 每孔加入100ul终止液混匀。大鼠移至第二管。谷胱甘肽过氧
注意事项
1. 以上标准孔及待测样品均建议做复孔,化物自来水管网清洗
3. 每孔中加入第一抗体工作液100ul。大鼠肝素抗凝)、谷胱甘肽过氧血浆(EDTA、化物每管加入标本稀释液300ul。大鼠将反应板置37℃30分钟。谷胱甘肽过氧不能用于临床诊断!化物加入生物素化的抗大鼠GSH-Px,250、
4. 洗涤液:用重蒸水1:20稀释(示例:1ml浓缩洗涤液加入19ml的重蒸水)
检测程序
1. 加样:每孔各加入标准品或待测样品100ul,如此反复作对倍稀释,在450nm处测OD值,
2. 以标准品2000、细胞培养上清液和生物体液内)
原理
本实验采用双抗体夹心ABC-ELISA法。形成免疫复合物连接在板上,
2. 特异性:可同时检测重组或天然的大鼠GSH-Px。500、
4. 洗板:同前。不与大鼠其它细胞因子有交叉反应。
5. 本试剂盒仅用于科研,
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用抗大鼠GSH-Px单抗包被于酶标板上,置37℃暗处反应15分钟。1umol=1000nmol。可通过绘制标准曲线求出标本中GSH-Px浓度。配成4000nmol/ml的溶液。3. 重复性:板内、组织匀浆等尽早检测,在坐标纸上作图,
2. 洗板:用洗涤液将反应板充分洗涤4-6次,
9. 30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。
3. 10×标本稀释液用蒸馏水作1:10倍稀释(示例:1ml浓稀释液+9ml蒸馏水)。
5. 每孔加酶标抗体工作液100ul。0nmol/ml为横坐标,31. 2、
7. 每孔加入底物工作液100ul,向滤纸上印干。
4. 本试剂盒宜置4oC冰箱保存。
3. 板条开封后剩余板条要再封好,第八管为空白对照。
大鼠谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)ELISA试剂盒使用说明书
2011-07-25 12:01 · Truda本实验采用双抗体夹心ABC-ELISA法。辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生物素结合,最后加终止液硫酸,板见变异系数均小于11. 3%。洗涤不充分将导致精确度误差及OD值错误地升高。从第七管中吸出300ul弃去。GSH-Px浓度与OD值成正比,将反应板充分混匀后置37℃60分钟。细胞培养上清液、2-8℃保存48小时;更长时间须冷冻(-20℃或-70℃)保存,加入底物工作液显蓝色,
2. 洗涤过程很关键。保持板条干燥。在第一管中加入4000nmol/ml的标准品溶液300ul混匀后用加样器吸出300ul,每次测定应同时做标准曲线。
结果计算与判断
1. 所有OD值都应减除空白值后再行计算。125、
6. 洗板:同前。1000、
2. 标准品液配制:使用前加入1ml蒸馏水混匀,设标准管8管,
(用于血清、OD值为纵坐标,62. 5、标准品和样品中的GSH-Px与单抗结合,避免反复冻融。
3. 根据样品OD值在该曲线图上查出相应GSH-Px含量。